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組織打孔器(Biopsy Punches)

  • 組織打孔器(Biopsy Punches) 1

組織打孔器(Biopsy Punches)

產品說明
組織打孔器/組織採檢器(Biopsy Punches)

電生理學–收集標本樣本進行斑貼記錄。
生物藥理學–活檢打孔器用於獲取神經遞質,以分析對活性物質的代謝變化。
抗衰老研究–收集皮膚樣本以觀察在再生組織產品和生物材料開發過程中抗衰老藥物的反應。
法醫採樣–法醫可以從皮膚,凝膠,薄膜,油漆碎片和紙張等材料中切割,檢索,存儲和彈出樣本。
芯片(Chip)上的微流體-Microfluidic PDMS Puncher

研究人員可以在由PDMS(聚二甲基矽氧烷)製成的微流控室中衝入流入口,出口和儲液池。
植物和醫學基因組學–可從植物的葉子,花朵和莖中收集樣品,用於DNA分離應用。


【初步選購指南】

【有限次數使用款】


※產品特色※
1.獨立無菌包裝、有限次使用、可滅菌(20 minutes at 250°F)
2.具檢體推出功能,不使用時可將尖端收起
3.材質尖端:不鏽鋼304、具有HRC58硬度的熱處理


 

【可重複使用組織打孔器套組】

  Reusable Rapid Punch Biopsy Kit

※產品規格※
1.套組包含:收納盒、打孔器本體*1、尖端*1、組織推出桿(plunger)*1
2.可另購替換尖端(搭配Reusable Rapid Biopsy Punch使用)
  打孔器本體適用任一規格尖端
  不同尖端需搭配不同規格
組織推出桿(plunger)

※套組產品編號※
Size=0.5mm   WPI#504640        
Size=1.0mm   WPI#504641        
Size=1.2mm   WPI#504642        
Size=2.0mm   WPI#504643     
Size=3.0mm   WPI#504644 
 

組織推出桿(plunger)規格:(Diameter: mm)
0.5、1.0、1.2、2.0、3.0 






【拋棄式組織打孔器】

※產品規格※
規格:EOG 滅菌
尺寸:10 種可選(擇一)。φ1.0/1.5/2.0/2.5/3.0/3.5/4.0/5.0/6.0/8.0mm

6.0及8.0mm可零售,剩餘款式不零售
另有規格φ10mm、15mm、20mm 可訂製,最低訂購量為10支以上

【打孔切割墊】

※產品特色※
1.保護您的工作表面和活檢打孔器的尖端
2.確保切割整齊,無毛刺或粗糙的邊緣
3.可逆的,可自癒的活檢打孔切割墊
4.用乙醇消毒、1.5毫米厚


※產品尺寸※
小:2.5 x 3英寸(WPI#504620)
大:6 x 8英寸(WPI#504621)




【腦組織取樣套組】

  Brain Punch Set
 用於冷凍腦切片的顯微解剖

“Palkovits Punch” technique of dissecting out specific brain nuclei for neurochemistry
  五件套組:Punch size- 0.25、0.50、0.75、1.0、1.25 mm
  三件套組:Punch size- 1.50、1.75、2.00 mm

※產品特色※
1. 每件套組配有尖端、彈簧推進器以及手柄
2. 將組織從冷凍的腦部切出後並排出。
3. 每個尖端均具有電拋光的鋒利末端,可實現平滑切割和最小的組織粘附。
   打孔尺寸為0.25、0.50、0.75、1.0、1.25、1.50、1.75和2.00mm
  (±5%,由於電拋光蝕刻而變得尖銳,因此會有細微變化)。
4. 較小的管通過同心管的外層(尖端處除外)進行了加固。
5. 可單獨購買更換沖頭。

※建議使用步驟※ (為了防止蛋白質變質,組織必須盡可能保持冷凍)。
1.將預計打孔的大腦或其他組織從麻醉的動物身上解剖下來並放入液態氮中。
2.將冷凍樣本安裝在切片基座上,放置在低溫中,並使其平衡至冷凍切片機溫度。此時,用於收集切片的玻片也被放置在低溫中以平衡溫度。
3.必須將標本調整到正確的截面平面,然後收集所需區域的關鍵截面。
4.獲得厚的組織(~200 micron)並放置在預冷的玻片上。冷凍切片會躺在冷凍玻璃上而不會黏附,因此必須小心不要掉落。
5.當載玻片裝滿時,用手指按壓載玻片底部,使組織部分解凍並與載玻片接觸,並立即在冷凍切片機中重新冷凍。
6.從冷凍切片機中取出玻片,並將其放在用乾冰冷卻的冷板(金屬)或培養皿上(黑色背景利於觀察)。
7.選擇適當大小的沖頭(punch),將尖端放在要移除的區域上,然後按下。組織點將從載玻片上脫離並留在打孔器中。
8.按下每個沖頭頂部的彈簧按鈕,將組織排出到收集介質中。



※參考文獻※

Al Nahas, K., Cama, J., Schaich, M., Hammond, K., Deshpande, S., Dekker, C., … Keyser, U. F. (2019).
A microfluidic platform for the characterisation of membrane active antimicrobials.
Lab on a Chip, 19(5), 837–844. https://doi.org/10.1039/C8LC00932E

Ionescu, A., Zahavi, E. E., Gradus, T., Ben-Yaakov, K., & Perlson, E. (2016).
Compartmental microfluidic system for studying muscle–neuron communication and neuromuscular junction maintenance. 
European Journal of Cell Biology, 95(2), 69–88. https://doi.org/10.1016/j.ejcb.2015.11.004


 
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